1 / 47

FORELESNINGSPLAN DNA replikasjon Prokaryot: 2t, 16/2 Eukaryot: 2t, 25/2

FORELESNINGSPLAN DNA replikasjon Prokaryot: 2t, 16/2 Eukaryot: 2t, 25/2 DNA reparasjon 2t, 1/3 Erik Boye Avdeling for Cellebiologi Det norske Radiumhospital HF 22934256 eboye@labmed.uio.no. Det sentrale problemet med cellesyklus. VEKST. CELLEDELING.

neveah
Download Presentation

FORELESNINGSPLAN DNA replikasjon Prokaryot: 2t, 16/2 Eukaryot: 2t, 25/2

An Image/Link below is provided (as is) to download presentation Download Policy: Content on the Website is provided to you AS IS for your information and personal use and may not be sold / licensed / shared on other websites without getting consent from its author. Content is provided to you AS IS for your information and personal use only. Download presentation by click this link. While downloading, if for some reason you are not able to download a presentation, the publisher may have deleted the file from their server. During download, if you can't get a presentation, the file might be deleted by the publisher.

E N D

Presentation Transcript


  1. FORELESNINGSPLAN DNA replikasjon Prokaryot: 2t, 16/2 Eukaryot: 2t, 25/2 DNA reparasjon 2t, 1/3 Erik Boye Avdeling for Cellebiologi Det norske Radiumhospital HF 22934256 eboye@labmed.uio.no

  2. Det sentrale problemet med cellesyklus VEKST CELLEDELING Hver dattercelle må få tildelt alle essensielle komponenter, som mitokondrier, ribosomer, organeller, etc. Disse er til stede i flere kopier, og da er det tilstrekkelig med en tilfeldig fordeling mellom dattercellene Hver dattercelle må få et fullstendig sett av alt kromosomalt DNA. Kromosomene må derfor bli duplisert, og de to kopiene må segregeres til hver datter. Denne prosessen må være helt nøyaktig og presist regulert.

  3. (a) dispersive Possible modes of DNA replication (b) semi-conservative Parent double helix (c) conservative KEY Parent DNA New DNA How does DNA replicate? Watson & Crick (1953) Nature 171: 737-738. “It has not escaped our notice that the specific pairing we have postulated immediately suggests a possible copying mechanism for the genetic material.”

  4. The Meselson-Stahl experiment (1958)Meselson and Stahl (1958) Proc. Natl. Acad. Sci. USA44: 671-682. E. coli cells were grown for many generations in ‘heavy’ medium (containing 15N, a heavy isotope of nitrogen). Cells were then transferred to ‘light’ medium (containing 14N). DNA samples were analysed by density gradient centrifugation. Heavy medium Light medium, 1 generation Light medium, 2 generations Inter- pretation:

  5. Hvilke oppgaver må løses under DNA replikasjon? • Kopiering av alle DNA-sekvenser • Kopiering kun EN gang pr celledeling, hverken • mer eller mindre. • Nøyaktig kopiering gir genetisk stabilitet. • Hvordan oppnå dette? • Definerte startpunkter (origins) • Finregulering av initiering • Nøyaktige polymeraser • Reparasjonsmekanismer • Presis segregering

  6. 3’ OH triphosphate 5’ 3’ OH deoxyribose phosphate Bases release of pyrophosphate adenine cytosine guanine hydrolysis hydrogen bond thymine Mechanism of DNA synthesis 5’ 5’ 3’

  7. Replikasjonsgaffel ?

  8. DNA polymeraser kan bare syntetisere 5’-3’. Hvordan går det med to antiparallelle tråder?

  9. Hvordan replikere en DNA-dupleks med enzymer som bare virker i én retning? Vist eksperimentelt av Reiji Okazaki i 1968

  10. Syntese av Okazaki-fragment og ny priming

  11. Semidiskontinuerlig replikasjon Elektronmikroskopisk bilde av replikerende D. melanogaster-DNA som bekrefter Okazaki-modellen (Kreigstein & Hogness 1974)

  12. Sammensetning av primosomet

  13. DNA polymerase III: En komplisert maskin

  14. DNA polymerase III: En komplisert maskin

  15. Andre proteiner som deltar i replikasjonen • DNA ligase - Covalently closes nicks in double-stranded DNA. • Primase - the enzyme responsible for catalyzing synthesis of RNA primers. • Clamps and clamp loaders - Protein from the DNA polymerase III holoenzyme complex holds the polymerase to the DNA. A multisubunit entity called the complex functions as the "clamp loader". • Single-strand DNA-binding (SSB) proteins – stabilizes ssDNA in the replication fork • Helicases – unwinds DNA by catalyzing the ATP-dependent unwinding of double-strand DNA. E. coli contains at least 6 different helicases--some involved in DNA repair and others in conjugation. The principal helicase in DNA replication is DnaB, which interacts with DnaG and other proteins to form the primosome. • Topoisomerases - Bidirectional replication of the circular E. coli chromosome unwinds about 100,000 base pairs per minute. Relief of this torsional stress is essential for DNA replication to occur. Topoisomerases are enzymes with a "swivel" mechanism that can relieve this stress.

  16. Opptvinning av DNA med DnaB og SSB

  17. The DnaB helicase

  18. ”Clamp loader”-komplekset monterer β-subenheten på DNA

  19. Clamp og Clamp loader

  20. Replikasjonsgaffel hos E. coli

  21. DNA-replikasjon i E. coli: Trombonemodellen

  22. DNA topoisomeraser endrer linking number (supercoiling)

  23. Hvordan oppnås høy nøyaktighet? • Balansert nivå av de fire dNTP • Polymerasereaksjonen har høy nøyaktighet • 3’-5’-ekonukleaseaktiviteten til Pol I og Pol III fjerner feil som polymeraseaktiviteten innfører • En rekke reparasjonssystemer tar seg av gjenværende feil

  24. Korrekturlesning: DNA polymerase I fjerner et feilinkorporert nukleotid

  25. 5’-3’-eksonukleasedomenet i DNA polymerase I fjerner nukleotider i 5’ –enden av et nick

  26. Krav til initiering: • Aktivt initiator-protein (DnaA) • Supercoilet substrat • - AT-rikt område

  27. Replikasjonsorigo: oriC

  28. The rate of DNA replication E. coli: Genome, 4 Mb = 4 x 106 bp Fork rate approx. 800 bp / sec Replication time approx. 40 minutes = 2,400 secs Amount replicated by 2 forks in 40 mins = 2 x 2400 x 800 = 3,840,000 bp (~4 Mb)

  29. Terminering av replikasjonen TerG

  30. DNA metylering I E. coli kan både cytosiner og adeniner bli enzymatisk metylert. Dcm metylasen lager 5-metylcytosin Dam metylasen lager 6-metyladenin Begge virker etter replikasjon. Cytosin metylering: Funksjon ukjent/restriksjon Adenin metylering er viktig for - Kontroll av DNA replikasjon - Reparasjon av DNA-skader - Genregulering - Beskyttelse mot fremmed DNA (?)

  31. Identifikasjon av SeqA oriC på et plasmid kan drive replikasjon Metylert oriC Dam+ : +++ Metylert oriC Dam- : --- Dam- : +++ Umetylert oriC Altså: Hemimetylert oriC blir ikke initiert. En mutant som mangler den negative regulator, vil tillate initiering av hemimetylert oriC, slik at Metylert oriC Dam- SeqA+: +++

  32. Fullt metylert oriC Replikasjon gir hemimetylert oriC Elongering og separasjon Sekvestrering med SeqA (membran?) Remetylering Frigjøring

  33. DnaA regulerer initieringstidspunktet. Økende DnaA-konsentrasjon Tidligere initiering og ved lavere cellemasse (Løbner-Olesen et al, Cell 1989) Men er DnaA nødvendigvis REGULATOREN in vivo?

  34. Three levels of negative control of DNA replication in E. coli: 1. Inactivation of the DnaA initiator 2. Sequestration of the origin of replication 3. Titration of DnaA to other chromosomal sites

  35. FLOW CYTOMETRY

  36. Initiering av DNA replikasjon er avhengig av • Proteinsyntese • RNA syntese • Hemming av disse prosessene vil derfor gjøre at • initiering stopper, mens elongering fortsetter. • Sluttresultat: • Antall hele kromosomer = antall oriC

  37. Asynkroni: Når IKKE alle origins i en celle blir initiert samtidig

  38. Mangel på initieringskontroll i en seqA mutant seqA+ seqA- 50 min 4 4 Antall celler 30 min 8 8 20 min 8 8 Antall kromosomer (Lu et al, Cell 1994)

  39. En generell cellesyklus i E. coli Deling Deling Deling B C 40 min D 20 min C og D er konstante. Hvordan går det når doblingstiden blir under 60 min?

More Related