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细胞凋亡

细胞凋亡. Apoptosis programmed cell death, PCD 徐霞. 凋亡细胞的形态学和生化特征: 细胞皱缩 质膜出泡 染色质浓缩 DNA 裂解: DNA ladder 磷脂酰丝氨酸由质膜内侧翻转至外侧 凋亡小体的释放. 核酸内切酶活化与 DNA 片段化是凋亡的 生物化学标志 。

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细胞凋亡

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Presentation Transcript


  1. 细胞凋亡 Apoptosis programmed cell death, PCD 徐霞

  2. 凋亡细胞的形态学和生化特征: 细胞皱缩 质膜出泡 染色质浓缩 DNA裂解:DNA ladder 磷脂酰丝氨酸由质膜内侧翻转至外侧 凋亡小体的释放

  3. 核酸内切酶活化与DNA片段化是凋亡的生物化学标志。 • DNA链上每隔200个核苷酸就有1个核小体,当核酸内切酶在核小体连接部切开DNA时,即可形成180~ 200bp或其整倍数的DNA片段。这些片段在琼脂糖凝胶电泳中可呈特征的阶梯状(ladder)条带,是判断细胞凋亡的客观指标之一。

  4. DNA ladder endonucleolytic DNA fragmentation nucleosome core histone DNA 180bp chromatin

  5. 细胞凋亡过程(四个阶段): 1. 凋亡信号转导 2. 凋亡基因激活 3. 凋亡的执行(由DNase 和caspases执行) 4. 凋亡细胞的清除。

  6. 细胞凋亡信号的转导 凋亡诱导因素 作用于 细胞 转化为 凋亡信号 胞内信号转导途径 激活细胞死亡程序 细胞凋亡(DNA片段化及蛋白解体等)。 细胞凋亡主要有三条通路: • 外源性通路(死亡受体途径) Fas, TNF… • 内源性通路(线粒体途径) • 内质网通路

  7. 细胞凋亡的三条通路 死亡配体 死亡受体 紫外线等 (如FasL)→(如Fas)→FADD→Caspase-8→凋亡酶体 ↓ ↓ DNA损伤 线粒体→Cytc→Apaf-1→Caspase-9→Caspase-3、6、7- ↓ ↓ P53↑ ↓ ↓ 底物 Bax↑、Bcl-2↓ ↓ 神经酰胺 细胞凋亡 内质网中Ca离子过多 未折叠的蛋白质积累→ →Bax/Bak→ →caspase-12

  8. 半胱天冬酶(胱冬酶,Caspase,Cysteine-containing aspartate-spicific protease) • Asp特异性半胱氨酸蛋白水解酶 • 可特异水解底物蛋白分子中天冬氨酸残基羧基侧的肽健,且对此Asp前面的4个氨基酸残基有要求。从而激活该蛋白质或改变蛋白质的活性,从而促进细胞凋亡。 N···· A-B-C-D-Asp-X ····C • 不同的Caspase对ABCD种类要求不同。

  9. Caspase的分类 (1)上游/启动型caspase: 2、8、9、10、12等 处于细胞凋亡信号传递途径的上游,在凋亡信号的刺激下首先被激活,然后再水解激活下游的caspase,启动细胞的凋亡过程; (2)下游/执行型caspase: 3、 6 、7等 处于细胞凋亡信号传递途径的下游,是在细胞凋亡过程中的具体执行者,被上游caspase激活后直接水解与细胞凋亡有关的底物蛋白,引起细胞形态和生物化学改变。

  10. Caspase的底物 • 100多种 • 细胞骨架蛋白:核纤层蛋白、肌动蛋白、核分裂相关蛋白等十几种蛋白→染色质聚集浓缩。 • 与DNA损伤修复相关的蛋白质和酶,阻止DNA损伤的修复。如:DNA依赖性蛋白激酶、DNA复制相关蛋白、聚(ADP-核糖)多聚酶(PARP)。 • 激活DNA酶,促进DNA断裂等。

  11. Caspase的作用 在诱导细胞凋亡中起关键作用,成为细胞凋亡的“中心处理器”。 Caspase是细胞凋亡的执行者,引起细胞凋亡的各种因素通过凋亡信号传递途经最终激活caspase,caspase通过水解不同的蛋白质改变细胞特性,引起细胞凋亡。但并非所有的凋亡过程都有caspase的参与。

  12. 细胞凋亡实验 Hela细胞培养至70-80% 接合,加30μL 大蒜素,培养2hr. ↓ 去除培养液,加PBS 500μL,细胞刮刀刮出细胞吸至EP管, 再用PBS 500μL洗平皿,2000rpm离心2min,弃上清. ↓ PBS洗1遍,离心收集细胞(2管) DNA Ladder Caspase-3活性检测 1管 1管

  13. DNA Ladder 细胞沉淀中加入200微升PBS,轻轻吹散或弹散细胞,使细胞重悬于PBS中。 ↓ 加入4微升RNase A,Vortex混匀。室温放置2分钟 ↓ 加入20微升蛋白酶K,Vortex混匀 ↓ 加入200微升样品裂解液B,Vortex混匀。70℃孵育10分钟 (加入样品裂解液B后必须立即Vortex混匀。不可把蛋白酶K直接和样品裂解液B混合) ↓ 加入200微升无水乙醇,Vortex混匀 (加入乙醇后必须充分混匀,否则会严重影响抽提效果。加入乙醇后可能产生白色沉淀,属正常现象,后续步骤中必须把白色沉淀和溶液全部转移到纯化柱内) ↓ 把上述混合物加入到DNA纯化柱内,8000rpm离心1分钟。倒弃收集管内液体。 ↓ 加入500微升洗涤液I,8000rpm离心1分钟。倒弃收集管内液体。 ↓ 加入600微升洗涤液II,12000rpm离心1分钟。倒弃收集管内液体。 ↓ 12000rpm离心1分钟,以去除残留乙醇 ↓ 将DNA纯化柱置于一洁净的1.5ml离心管上,加入50μL洗脱液。室温放置3分钟。 ↓ 12000rpm离心1分钟,所得液体即为纯化得到的总DNA。 (洗脱液需要直接加至纯化柱管内柱面中央,使液体被纯化柱吸收)

  14. 琼脂糖凝胶电泳 将抽提得到的DNA 50μL+10Loading buffer 6μL,混匀,上样进行1%琼脂糖凝胶电泳分析。电压60V,时间3-4hr,观察DNA ladder的形成。

  15. Caspase-3活性检测 细胞沉淀加入50微升裂解液,重悬沉淀,冰浴裂解15分钟 ↓ 12,000g离心15分钟 ↓ 把上清转移到预冷的离心管中 ↓ 立即测定caspase 3的酶活性。同时取少量样品用Bradford法测定蛋白浓度 ↓ 设置反应体系: ↓ 加入Ac-DEVD-pNA (2mM)后混匀,注意避免在混匀时产生气泡。37℃孵育2hr。发现颜色变化比较明显时即可测定A405。如果颜色变化不明显,可以适当延长孵育时间 ↓ 计算caspase 3的酶活力单位

  16. Bradford法测定样品蛋白浓度 室温放置5min 酶标仪测定样品的A570-空白对照的A570 (y) 根据公式计算样品蛋白浓度:y=0.0006x+0.0238

  17. 样品中caspase 3催化生成的pNA的吸光度(y)=样品的A405-空白对照的A405 ↓ 通过标准曲线公式:y=0.0025x+0.0103,求出样品中催化产生的pNA的量。 ↓ 样品单位重量蛋白中所含caspase 3的酶活力单位 = 样品中酶催化产生pNA的量 / 待测样品蛋白浓度

  18. 预试结果:DNA Ladder

  19. 预试结果:caspase3标准曲线

  20. 蛋白浓度测定标准曲线

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